Seplife? LXMS 50HS是以多聚物為基架的強陽離子交換介質，與傳統的瓊脂糖層析介質相比可在高壓力與高流速下進行操作，使用時反壓低，便于線性放大，穩定性良好。同時該層析介質具有高的耐鹽性、高分辨率、高且穩定的蛋白結合載量能力，可減少純化過程中稀釋過程，減少透析與超濾換液的操作步驟，提高工藝靈活性，便于上下游純化工藝銜接，廣泛用于單克隆抗體、重組蛋白、疫苗、血液制品、病毒、DNA以及多肽類產品的分離和純化。

＊檢測條件：層析柱16mm×200mm；＊柱床高10cm；溫度25℃；流動相為0.1mol/L NaCl

使用方法

3.1 裝柱

勻漿濃度等于靜置膠體積除以除以勻漿后的總體積。采用0.5M NaCl勻漿可獲得最佳裝柱效果，其濃度為60%-70%。方法如下：

1)色譜柱的柱體積 V，V=Ac×L，Ac=π×r2。

Ac：色譜柱橫截面積；L:色譜柱高度；r：色譜柱半徑。

2) 攪動介質形成勻漿液，量取所需質量或體積。其為柱體積的1.2倍左右，防止收縮。

3）用 0.5 M NaCl 溶液置換20%乙醇，平衡過夜。

4）裝柱之前，用 0.5 M NaCl 溶液調整勻漿濃度為 65 ~ 70%；將勻漿一次性倒入層析柱，沉降平衡后標注高度。

5）將分配器裝入，調節高度使得壓縮系數為 1.05 ~ 1.10；然后啟動輸液泵，用 1.5~2 倍工作流速使柱床穩定。

6）按照 SOP 進行柱效和對稱性的測定，須達到預定標準。 

3.2 柱效評價 

裝好之后，色譜柱用3-5體積超純水清洗。100cm/h流速平衡并進行柱效測試。

離子交換層析柱的柱效測試方法

樣品：      2 M NaCl 溶液 

上樣量：    1~5 % 柱體積 

洗脫液：    0.5 M NaCl 溶液 

線性流速：  100 cm/h 

檢測：      UV @ 280 nm ,2 M NaCl 上樣：電導檢測儀

3.3 清洗 

裝好的色譜柱應使用至少使用5BV的去離子水清洗。 

3.4 平衡 

使用適當的5-10倍柱體積緩沖液進行柱子的平衡，至流出液電導和PH不變（與平衡液一致），緩沖液 如 Buffer A，如 20 mM PBS, pH7.0，具體的緩沖體系應根據目標蛋白的穩定性和等電點、離子交換介質的種類進行篩選和優化。 

3.5上樣 

固體樣品可用平衡液溶解配制；低濃度樣品溶液可用平衡液透析；高濃度樣品溶液可用平衡液稀釋。為了避免堵塞層析柱，樣品應經離心或膜過濾處理。進料量根據介質的載量和料液中目標蛋白的含量計算，上樣前確保樣品緩沖液應盡可能與平衡液一致。 

3.6洗脫 

上樣完畢后繼續用平衡緩沖液淋洗至基線穩定，可以根據實際情況采取提高鹽濃度或改變流動相 pH 的方法依次洗脫吸附于層析介質上的樣品。 

3.7再生 

每次層析之后可用0.5-2 M NaCl 清洗層析柱，除去強結合于層析介質上的蛋白。 

3.8 在位清洗 

為了保持層析柱的性能，若有蛋白質或其他雜質在再生過程中未能有效去除，可執行在位清洗步驟，在位清洗時，也可采用反向沖洗的方法，具體操作步驟如下： 

（1）對于通過離子鍵結合過強的蛋白，可用3BV以上的2M NaCl 清洗，并用3BV以上的去離子水清洗； 

（2）對沉淀蛋白、以疏水性結合的蛋白或脂蛋白，可用0.2~0.5 M NaOH 清洗（與層析介質接觸時間 1~2 h），并用5BV以上平衡液和3BV以上的去離子水清洗； 

（3）對強疏水性結合的蛋白、脂蛋白和脂類物質，可用5BV以上的50%乙醇或 30%異丙醇清洗（與層析介質接觸時間0.5-1 h），并用5 BV以上的去離子水清洗。也可用含非離子表面活性劑的堿性或酸性溶液清洗，如0.1~0.5%的 Triton X-100 + 0.1 M乙酸清洗 1-2 h，并用5BV以上的50%乙醇沖洗去除去污劑，然后用5BV以上的純水沖洗（使用高濃度的有機溶劑時，為了避免產生氣泡，應采用逐步增加有機溶劑濃度的方法）。 

4.存儲

暫時不使用的層析介質需保存在 4～30 ℃ 的 20%乙醇中，已經裝好的層析柱應保存在含 20%乙醇的緩沖液(pH 7.0)；使用前請裝柱后將乙醇清洗干凈。

5.運輸

運輸中避免日曬、雨淋、重壓，嚴禁與有毒、有害物品混運。

生產日期：見標簽

使用期限：在適當的貯藏條件下可貯藏5年

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